Забор материала – сравнительная характеристика, достоинства и недостатки, советы по выбору

Читайте в этой публикации:
Материалы для забора: опоры комбинированных заборов
Материалы для заборов и ограждений: из чего изготовить секции
Новые материалы для забора: готовые решения

Любое строительство или изготовление чего-нибудь начинается с выбора материалов – первый вопрос, который возникает у человека, это из чего строить. Не исключением в этом отношении является и такое строение, как забор на даче – усугубляется все дело огромным выбором различных строительных материалов. О них и пойдет разговор в данной статье – вместе с сайтом moyadacha.org мы изучим материалы для забора и ознакомимся с их особенностями. На основании полученной информации вы сможете достаточно просто решить вопрос, из чего строить дачный забор?

Виды материалов для забора фото

Материалы для забора: опоры комбинированных заборов

Так уж случилось, что комбинированные заборы, изготовленные из разноплановых материалов, смотрятся более привлекательно – мало того, такой подход к делу позволяет менять свойства строения в целом и снижать или увеличивать его себестоимость. В общем, правильный выбор материала для отдельных частей строения – это не только экономия средств, но и надежность забора. В первую очередь за надежность и долговременность ограждения дачи отвечают опорные столбики, изготовить которые можно из следующих материалов.

1. Кирпич. В большинстве случаев применяется красный облицовочный кирпич, но иногда используется и силикатный материал данного типа. Это достаточно прочные и способные выдерживать большую нагрузку материалы, которые имеют только один недостаток – большой вес. Изготовить кирпичные опоры на голой земле не получится – для забора с такими опорами понадобится возводить фундамент. В плане дизайна как красный, так и силикатный кирпич весьма неплохо смотрится практически со всеми материалами, применяемыми для изготовления секций забора.
2. Камень. Вариант практически такой же, как и в случае с кирпичом, за исключением одного момента – дизайнерского. В плане эстетики далеко не каждый существующий нынче материал для постройки забора, а вернее для изготовления его секций, отлично сочетается с природным камнем. К примеру, профнастил или поликарбонат не сочетается с ним вообще – на фоне каменных опор отлично смотрятся разве что кованные или такие же каменные пролеты.

   Материалы для забора фото

3. Профильная или круглая труба. Весьма недорогой вариант изготовить опоры забора – мало того, этот материал позволяет устанавливать забор практически на голый грунт, не возводя при этом фундамент. Трубы монтируются в углубления в почве с помощью бетона. С одной стороны это плюс, а с другой – минус – такие опоры могут выдержать легковесные секции, изготовленные из листового материала. Например, все из того же поликарбоната, плоского шифера, штакетника или профилированного настила.
4. Древесина. Это не совсем хорошая идея несмотря на то, что многие люди пытаются обмануть судьбу таким образом, заменяя металлические столбики деревянными сравнительно недорогими брусками. Древесина гниет в земле, даже если ее обработать надлежащим образом. Если уж вы хотите деревянный забор для дачи, то делать его нужно из металла – хотя бы его каркас, который впоследствии обшивается древесиной (штакетником).

Как вариант, можно рассмотреть бетонные опоры, которые в основном применяются в паре с бетонными пролетами (еврозабор), также неплохим вариантом может оказаться декоративный шлакоблок, под который, как и под камень, понадобится залить фундамент. О вариантах самостоятельного строительства заборов на даче смотрите в этом видео.

Материалы для заборов и ограждений: из чего изготовить секции

Секции забора могут изготавливаться как из того же материала, что и опоры, так и из другого материала. Естественно, не во всех случаях – к примеру, если опоры можно изготовить из труб, то секции из них будут выглядеть не очень хорошо. Такой подход к делу приемлем только к кирпичным, каменным и прочим блочным столбикам для забора – если из них же делать секции, то ограждение получается весьма прочным и привлекательным. Во всех других ситуациях, опять-таки, приходится прибегать к комбинированию – кстати, для каменных и блочных заборов также можно делать секции из других материалов. Смотрятся они весьма привлекательно.

1. Профнастил. Это самый распространенный на сегодняшний день строительный материал для забора – мало того, он не слишком дорогой, легкий и в то же время весьма прочный. Недостаток у профнастила только один – для его установки нужна рамка из металлического уголка. В принципе, можно обойтись и без него, но в такой ситуации изгородь для дачи получится не слишком прочная и надежная. Сочетается профнастил с любыми типами опорных столбиков, кроме натурального камня – хотя как знать, ведь вкусы у всех разные.

   Материал для постройки забора фото

2. Древесина. Это естественный природный материал, который при надлежащей обработке может составить конкуренцию любому другому материалу для дачных заборов. Вариантов использования древесины предостаточно – это и штакетник, и плетеный из досок или толстых прутьев забор, и даже рамочные щитовые конструкции. У них всех имеется пара недостатков, а вернее сказать, особенностей: во-первых, такие пролеты забора не должны иметь контакта с почвой (в противном случае они быстро сгнивают) и, во-вторых, деревянный забор необходимо периодически красить с регулярностью раз в пару лет.
3. Поликарбонат. Неплохая альтернатива профнастилу – основной особенностью поликарбоната является его светопропускная способность. Такой забор практически не создает тень и, соответственно, не мешает произрастать культурным растениям. За такое преимущество приходится расплачиваться хрупкостью материала – его очень легко разбить. Даже град представляет опасность для заборов данного типа.

   Легкий материал для забора фото

4. Кирпич или камень. Как и говорилось выше, кирпичные или каменные секции используются в основном в паре с такими же опорными столбиками – в результате получается забор, по виду напоминающий неприступное ограждение. Массивный вид и никакого изящества.

Как вариант, можно просмотреть и другие виды материалов для заборов – к примеру, отлично дополнят кирпичные или каменные столбики секции, сваренные из квадратного прутка и разбавленные элементами ковки. Довольно просто, дешево и сердито изготавливается забор из сетки рабицы – это вообще, можно сказать, самый дешевый материал для забора. Металлические трубчатые стойки, на которые натянута сетка рабица, и огород не затеняют и чужакам преграждают дорогу.

Дешевый материал для забора фото

Новые материалы для забора: готовые решения

Кроме описанного выше подхода к делу изготовления дачного забора, существует и другой вариант – заключается он в приобретении готового забора. Это своего рода конструктор, состоящий из опор и пролетов, основным преимуществом которого является простая (если не сказать что элементарная) сборка. Конструкторов такого плана сегодня производится весьма много, но среди недорогих и наиболее распространенных вариантов можно выделить всего несколько.

1. Еврозабор (декоративный бетон). Весьма недорогой вариант, но, как водится, не очень надежный. В бол

moyadacha.org

Правила забора материала на исследование из различных органов и систем

Забор материала с кожи больного. При появлении гнойно-воспалительного процесса в ране, раневое отделяемое, гной, кусочки инфицированных тканей (грануляции, мышцы и т.п.) подвергают микробиологическому исследованию.

Исследуемый материал чаще всего содержит большое количество микроорганизмов, являющихся возбудителями раневых и гнойных инфекций. Однако, открытые раны часто бывают контаминированы различными бактериями, что затрудняет выделение этиологического агента.

Взятие материала производит лечащий врач при соблюдении правил асептики. При взятии материала из раны стерильным ватным тампоном кожу вокруг раны предварительно обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит и гной удаляют стерильной салфеткой. Взятие материала стерильным тампоном производят круговыми вращательными движениями от центра к периферии поверхности раны. Материал берут двумя тампонами, один из которых используют для микроскопии, а другой — для посева.

При наличии в ране дренажей для активной аспирации отделяемого последнего отсасывают шприцем и в количестве 1 – 2 мл и помещают в стерильную пробирку. Кусочки тканей, гной, промывную жидкость из дренажей также берут в стерильные пробирки при соблюдении всех правил асептики.

Исследуемый материал необходимо доставить в микробиологическую лабораторию в течение одного часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более двух часов.

Забот материала их уха.При поражении наружного уха проводят обработку кожи 70% спиртом с последующим промыванием физиологическим раствором, затем отделяемое из очага собирают на стерильный ватный тампон.

При поражениях среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную посуду.

Забор материала из глаза. Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. Не менее чем за 5 – 6 часов до исследования отменяют все медикаменты и процедуры. Взятие материала производят врач — окулист.

Конъюнктива. Отделяемое конъюнктивы берут предварительно прожженной в пламени спиртовки и остуженной платиновой петлей или стеклянными стерильными палочками. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны, которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).

Край век. Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.

Роговица.Материал на исследование, после обезболивания, можно взять платиновой петлей или другим подходящим инструментом. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность влажным тампоном.

Забор материал из дыхательных путей. Материалом для изучения этиологии заболеваний дыхательных путей служат: отделяемое зева, мокрота, содержимое бронхов, полученное при бронхоскопии или при отсасывании через трахеостому (у больных, находящихся на аппаратном дыхании), экссудаты из плевральной полости, резецированные ткани и др. Материал собирают с соблюдением правил асептики в предварительно простерилизованные баночки или пробирки и доставляют в лабораторию. Хранение материала способствует размножению сапрофитной микрофлоры, развитию процессов гниения и брожения, что искажает результаты анализа. Интервал между взятием материала и его посевом не должен превышать 1 – 2 часа.

Мокроту (но не слюну) необходимо собирать из нижних отделов дыхательных путей.

Общий анализ мокроты – собирают утреннюю мокроту не менее 1 мл в стерильную стеклянную посуду, после чистки зубов и полоскания полости рта.

Промывные воды бронхов. При отсутствии или скудном количестве мокроты производят смыв из бронхов физиологическим раствором, однако, при этом микробиологическая ценность исследования снижается из-за разведения секрета (часто значительно) и бактерицидного действия раствора на чувствительные микроорганизмы, поэтому нередко концентрация бактерий в бронхиальном содержимом в 10 – 1000 раз ниже, чем в мокроте. Кроме того, трудоемкость эндоскопического взятия материала и тяжесть манипуляции для больного ограничивает проведение повторных исследований в динамике заболевания.

Пунктат инфильтрата или абсцесса легкого. Исследование пунктата наиболее эффективно до прорыва инфильтрата или абсцесса в дренирующий бронх. При трансторакальной пункции получают материал непосредственно из очага поражения и избегают его обсеменения посторонней микрофлорой.

Пунктат плевральной полости. Экссудат из плевральной полости получают с соблюдением правил асептики при проведении пункции плевральной полости.

Забор материала из носа. Материал для исследования из полости носа берут стерильным тампоном.

Забор материала из полости рота. Материал для исследования из верхних дыхательных путей берут тампоном: сначала с каждой миндалины, а затем с задней стенки глотки. Посев должен быть сделан сразу же после взятия материала.

Исследуемый материал из полости рта берут натощак или через 2 часа после приема пищи и питья стерильным ватным тампоном или гладилкой. Забор производиться со слизистых оболочек щек, десен, языка, выходных отверстий протоков слюнных желез. При наличии пленки на слизистой оболочке щек ее снимают стерильным пинцетом, а затем забирают материал стерильным тампоном.

Забор материала из желудочно-кишечного тракта. Для исследования содержимого желудка материал собирают при зондировании, также можно брать на исследование и рвотные массы; их собирают в не стерильную посуду. При необходимости для получения биоптата слизистой оболочки желудка делают ФГДС и берут на исследование кусочки слизистой оболочки. Материалом для исследования из двенадцати перстной кишки служит биоптат слизистой оболочки, полученный при ФГДС.

При заболеваниях толстого кишечника чаще всего на исследование берут фекалии. Если каловые массы оформленные, материал берут со стерильного судна из нескольких мест стеклянной, деревянной или металлической палочкой и помещают в стеклянный или пластмассовый сосуд. Из прямой кишки материал берут тампоном или пластмассовой трубочкой с отверстием в боковой стенке. Исследование следует проводить в течение 1 часа после взятия. Если это невозможно, пробы можно сохранять при температуре 0 ⁰С около суток.

При заболеваниях печени и желчного пузыря на исследование забирают желчь, которую собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно порции А, В и С в три стерильные пробирки, либо во время операции с помощью шприца в одну пробирку, соблюдая правила асептики. Полученные порции желчи доставляют в лабораторию не позднее 1 – 2 часов от момента взятия, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении.

Забор материала из мочи. Для исследования берут «среднюю» порцию утренней мочи, собранную в стерильную посуду, в количестве 5-10 мл. Утренняя моча обычно задерживается в течение нескольких часов в мочевом пузыре, что способствует увеличению микробного числа. Моча отдельно может быть собрана из правой и левой почек и мочеточников (0,5–1,0мл) катетером при проведении цистоскопии. Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не применяется, так как она может привести к инфицированию мочевых путей. К катетеризации мочевого пузыря прибегают в некоторых случаях для уточнения локализации инфекции – в мочевом пузыре или в почках. С этой целью мочевой пузырь опорожняют катетером и промывают раствором антибиотика, после чего с интервалом в 10 минут берут пробы мочи для исследования. Если инфекция локализуется в почках, микроорганизмы содержатся во всех порциях мочи. При инфекции мочевого пузыря вторая порция мочи остается стерильной.

В некоторых случаях делают надлобковую пункцию мочевого пузыря, при которой получают наиболее достоверные результаты.

Материал для исследования следует брать до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения.

Содержащиеся в моче микробы быстро размножаются при комнатной температуре, что может дать ложные результаты при определении степени бактериурии. В связи с этим, от момента взятия пробы мочи до начала ее исследования в лаборатории должно проходить не более 1 – 2 часов при хранении при комнатной температуре и не более суток – при хранении в холодильнике.

Забор материала из уретры и влагалища. У мужчин отделяемое уретры берут ложкой Фолькмана или специальным тампоном. Желательно, чтобы перед этой процедурой пациент не мочился. Также можно взять на исследование мазки со слизистой оболочки уретры, эякулят, пунктат придатка яичка и секрет предстательной железы.

У женщин материал берут из уретры, цервикального канала, а также проксимальной трети и заднего свода влагалища ложкой Фолькмана, ватным тампоном или пипеткой. Материал для исследования необходимо немедленно доставить в лабораторию, так как во внешней среде микроорганизмы быстро погибают.

Взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог при подозрении на инфекционную природу патологического процесса.

studfiles.net

из каких материалов можно изготовить забор своими силами и технология строительства

Хороший забор служит не только способом защиты от незваных гостей и ненужных взглядов, но также служит визитной карточкой вашего дома или участка. На сегодня существует огромное количество строительных материалов для воздвижения забора. Как правильно сделать выбор? Для начала необходимо определиться с функцией и назначением будущего забора. Если забор будет ограждать фасадную часть дома со стороны улицы или от соседей, то необходимо построить внушительный, мощный забор. Здесь может использоваться металл, профлист, кирпич. Ограждения внутри можно соорудить из материала попроще: дерево, сетка-рабица, искусственный камень. Рассмотрим более подробно каждый из них.

Материалы для изготовления заборов

Бетонный забор — достаточно медленно строится, но в отношении цены и качество он занимает первое место. Бетон является долговечным и неприхотливым в обслуживании материалом. В последнее время широкой популярностью пользуются наборные бетонные заборы, которые имеют множество преимуществ:

• прочность;
• надежность;
• долговечность;
• простота сборки;
• многообразие дизайна;
• его можно устанавливать в любом грунте;
• строительство осуществляется намного быстрее, чем кирпичного забора.

Но у него есть и свои недостатки:

• имеет габаритную конструкцию по сравнению с металлическим или деревянным забором;
• недостаточная проветриваемость участка;
• боится температурных перепадов и смещения неустойчивого грунта. Если во время монтажа не учитывать определенные нюансы в технологии, то после зимы забор вместе с секциями могут просто-напросто развалиться.

Деревянный забор

Распространение деревянных заборов можно объяснить множеством различных пиломатериалов и приемлемыми на них ценами. Также они гармонируют с садом, окружающей средой, разными материалами. Но в то же время такой забор нуждается в особом уходе в процессе его эксплуатации.

Металлический и кованый забор

Металлический и кованый забор также не уступает по своей популярности на сегодняшний день, по рисунку и стилю он составляет цельный ансамбль с территорией дома. Изготовление такого вида забора происходит по индивидуальному заказу. Стилей существует огромное количество — от классического барокко до современного модерна или минимализма.

Кованые заборы, в основном, изготавливаются из металла. Зачастую в общую композицию забора вставляется камень. Кованый забор является важной частью безопасности дома, он должен быть не только элегантным и красивым, но еще прочным и надежным.

Среди преимуществ металлических заборов можно отметить:

• эстетичный внешний вид;
• не требует постоянного ухода;
• возможность возведения забора по индивидуальному чертежу;
• простота в изготовлении;
• возможность воплощения многообразных дизайнерских идей;
• относительная дешевизна готовых изделий;
• не подвергается какой-либо коррозии.

Недостатки металлических заборов:

• отсутствие защиты от ветра и посторонних взглядов;
• отсутствие защиты от проникновения на участок мелких животных.

Из профнастила

Профнастил способен оградить от шумных воздействий извне, также служит непреодолимым барьером для домашних животных. Отлично сочетается с любым дизайном благодаря большому выбору цветовой гаммы покрытия, которое имеет качество высокое и устойчивое к воздействию влаги, выцветанию и других факторов.

Но, ничего идеального, как известно не бывает, так и забор из профнастила имеет свои недостатки. Он глухой, от него образуется много тени, а это для растений не всегда хорошо, взгляд натыкается на стену. Также недостатком является и покупка дорогих металлических труб, которые необходимы.

Забор из кирпича

Кирпичный забор эффектно показывает изысканный вкус владельца и решает проблему по поводу безопасности жилья. Кирпичный забор неплохо совмещается с остальными строительными материалами: металлом, деревом, камнем. Зеленые насаждения оригинально и интересно украсят забор, придадут ему привлекательный внешний вид.

Если стоит вопрос, какие материалы использовать для изготовления ограждения своими руками, и чтобы они были также не слишком дорогостоящими, можно отдать предпочтение следующим вариантам:

• забор из профнастила;
• деревянный забор;
• забор из рабицы;
• кирпичный забор;
• забор из бетонных (фигурных) секций.

Технология построения забора из профнастила

Следующий этап состоит из подготовки необходимых углублений для установки столбиков для забора. С помощью специального ручного бура изготавливаются ямки с глубиной 70−100 см. В них утрамбовкой или бетонированием устанавливаются опорные столбики. Причем первый метод отличается меньшей стоимостью, а второй обеспечит более высокую механическую прочность.

Для правильной технологии бетонирования столбиков используется бетонный раствор в пропорции 1:3:4, соответственно цемент: песок: щебенка, который разводится водой. Начинать монтировать лучше с крайних столбиков, а затем с помощью натягивания шнура устанавливать последующие, высота которых должна быть одинаковой. Проверять установку необходимо строительным уровнем или отвесом. Следующий этап нужно выполнять только после абсолютного застывания бетона, т. е. через 2−3 суток.

После окончания работы со столбиками нужно закрепить специальные перемычки (лаги) для монтажа непосредственно листов профнастила. Лучшим вариантом станет приваривание их к столбикам, но возможен и метод прикручивания болтами, для чего заранее делаются монтажные отверстия. В качестве лага можно использовать уголок 40×40 мм или квадратную трубу 25×40мм, их количество на высоту забора в два метра должно составлять как минимум 2 штуки. После сооружения каркаса нужно еще раз покрыть его лакокрасочным составом.

Последним этапом станет крепление материала к самому каркасу. Для этой цели лучше пользоваться специальными саморезами, которые прикручиваются к каркасу шуруповертом или электродрелью с битой. Саморезы крепятся во внутренней стороне с промежутком в 100−150 мм. Чтобы отрезать профнастил, можно использовать болгарку с отрезным кругом. Участки образования кромок подравнивают с помощью напильника. Вдобавок рекомендуется заполнить пространство между профнастилом и поверхностью грунта бетонным составом или шлакоблоком, который позволит продлить время эксплуатации забора.

Технология построения деревянного забора

Для начала, чтобы уберечь дерево от гниения, необходимо покрыть его любой защитной основой. Затем необходимо определиться с высотой и пропорцией забора. Далее идет сам процесс строительства.

1. Следует выполнить разметку участка, подсчитать количество столбов и штакетин.
2. Нижняя часть, которая уйдет под землю, обрабатывается гудроном, верхняя заостряется и придается гладкости.
3. Дальше делается разметка под столбы по натянутому шнуру. Расстояние между столбиками составит 2−3 м, а высота углубления под них — 1−1,5 м.
4. После установки столбов сверху и снизу ограждения натягивается шнурок, таким способом определяется место прожилин.
5. Последним этапом будет прибивание штакетника.

Технология построения бетонного забора

Итак, для начала необходимо протянуть шнур на высоту в 0,5 м от земли. Дальше через каждые два метра делаются углубления глубиной в 50 см. В эти углубления устанавливаются столбы и выравниваются строительным уровнем. Их необходимо зафиксировать, для этого используется крупный щебень или битый кирпич. В паз столба вкладывается рейка и вставляется в следующий столб. Последний должен стоять так, чтоб рейка точно отвечала показаниям уровня. Дальше фиксируется второй столб, рейки остаются на месте. После установки всех столбов в лунки заливается раствор с пропорцией 4:1. Бетон должен застыть. Поэтому после 3-х суток можно приступать непосредственно к сборке забора.

nashgazon.com

Забор материала на ПЦР

Полимеразная цепная реакция (ПЦР) – это высокочувствительный метод лабораторной диагностики инфекционных болезней и генетических мутаций у человека. Его принцип заключает в обнаружении специфичных участков молекулы ДНК или РНК в исследуемой биопробе, что говорит о присутствии в ней возбудителя/искомых генов. Забор материала на пцр: что это может быть? Для исследования подходят любые биологические жидкости (кровь, моча, ликвор, сперма, сок простаты), соскобы клеток со слизистых оболочек, образцы живой ткани.

Показания

Наиболее часто в клинике проводят ПЦР для диагностики вирусных инфекций и ИППП, так как выделение их возбудителей другими методами малоэффективно. Методика позволяет с высокой точностью и в короткие сроки подтвердить:

• хламидиоз;
• уреаплазмоз;
• микоплазмоз;
• инфекцию ВПЧ;
• герпетические инфекции;
• гонорею;
• трихомониаз;
• вирусные гепатиты А, В, С;
• цитомегаловирусную инфекцию;
• инфекционный мононуклеоз;
• краснуху;
• грипп;
• ротавирусную инфекцию.

Исследование назначается при наличии симптомов перечисленных заболеваний, обнаружении специфических антител к их возбудителям в крови или при прохождении профилактических осмотров (подготовка к беременности).

ПЦР проводят для подтверждения генетических заболеваний, выявления причины бесплодия, обнаружения наследственной предрасположенности к различного рода болезням. Расшифровка генетического кода человека позволяет оценить с помощью ПЦР склонность к алкоголизму, наркомании, риск развития рака, подобрать наиболее подходящие виды спорта, определить чувствительность к лекарственным веществам.

Противопоказания

Метод не имеет абсолютных противопоказаний, к относительным можно отнести ситуации, при которых невозможно без вреда для здоровья пациента забрать биологический материал. Один из возможных вариантов — острый тромбофлебит, при котором нельзя проникать в вену иглой.

Подготовка

Подготовка напрямую зависит от характера исследуемого материала:

• Кровь сдается натощак или после легкого завтрака, желательно не принимать лекарственные препараты за 2-3 дня до процедуры. Жирная пища, медикаменты, насыщенность плазмы крови билирубином приводят к получению недостоверных результатов.
• Сок предстательный железы у мужчин берут после 2-3 дней полового воздержания и массажа простаты.
• Соскоб слизистой из уретры у мужчин и женщин, соскоб с шейки матки проводится после суток полового воздержания, чтобы исключить попадание в пробу микрофлоры партнера. Нельзя спринцевать влагалище до исследования – это снизит концентрацию возбудителя в половых путях.
• Перед сбором мочи следует тщательно подмыть половые органы с мылом.

Методика проведения ПЦР

Забор материала на пцр проводится стерильным одноразовым инструментом, врач обязательно меняет перчатки перед каждым пациентом. Высокая чувствительность метода повышает риск ложноположительных результатов, если в исследуемую пробу попадает хотя бы одна вирусная или бактериальная частица от другого пациента, с рук доктора, лаборанта или из внешней среды. Большинство возбудителей ИППП паразитируют внутри клеток эпителия уретры, влагалища, шейки матки, поэтому для анализа требуется соскоб клеток со слизистой.

В арсенале врачей-гинекологов и урологов имеются одноразовые упакованные наборы для забора материала из урогенитального тракта. В них входят цитощеточка на длинной рукоятке и небольшая пластиковая пробирка, заполненная транспортной средой. Доктор вводит щеточку в уретру/цервикальный канал, несколько раз прокручивает, аккуратно вынимает и помещает в пробирку. Полученную пробу с направлением в тот же день доставляют в ПЦР-лабораторию.

Врач-лаборант внимательно маркирует полученный материал, чтобы пациент получил именно свой результат анализа. После он приступает к выделению ДНК/РНК из полученного материала при помощи реагентов, центрифугирования и сорбции. Таким образом, лаборант очищает пробу от балластных веществ и на следующий этап ПЦР отправляет только нуклеиновые кислоты (ДНК/РНК).

Нуклеиновые кислоты – это природные полимеры, то есть, соединения, состоящие из большого количества однотипных элементов (мономеров). Каждый ген вируса, бактерии или человека имеет специфический набор мономеров, что позволяет их выделять в отдельные структуры и исследовать их функцию. При делении клеток/бактерий нуклеиновая кислота удваивается, чтобы в неизменном виде распределиться по двум дочерним клеткам. Методика ПЦР – это искусственно повторенная в пробирке процедура удвоения ДНК/РНК. Исследователи выделили все необходимые для этого процесса ферменты, синтезировали их и научились с их помощью получать неограниченное число копий нуклеиновых кислот.

Второй этап ПЦР – это амплификация или копирование обнаруженной ДНК/РНК. Она не происходит, если в биопробе нет искомых генов. Для каждого гена разработаны праймеры – органические соединения, которые связываются только с определенной последовательностью мономеров на протяжении всей молекулы нуклеиновой кислоты. В норме у человека нет РНК папилломавируса или ДНК хламидий, поэтому их обнаружение методом ПЦР свидетельствует об инфекционном процессе. Амплификацию проводят в специальном приборе – термоциклере, который поддерживает температуру содержимого пробирок на уровне 37 градусов С, чем создает идеальные условия для работы ферментов. Термоциклер следит за ходом реакции и выдает полученное количество ДНК/РНК копий на монитор компьютера (функция real-time). Данный показатель позволяет рассчитать количество возбудителя в исходном материале.

Возможные осложнения

Забор материала на пцр иппп на фоне выраженного воспаления слизистых оболочек может приводить к незначительной кровоточивости. В этом случае у женщины появляются прожилки крови в отделяемом из влагалища, у мужчин слегка окрашивается моча или сперма. Описанные изменения самостоятельно проходят в течение суток и не требуют медицинской помощи.

Расшифровка результатов ПЦР

В выдаваемом заключении врач-лаборант указывает обнаружен/нет генетический материал возбудителя, при положительном результате – количество микроорганизмов в 1 мл крови. При вирусных инфекциях этот показатель называется вирусной нагрузкой, он используется для контроля терапии гепатитов В,С, ВИЧ-инфекции. Если по какой-то причине анализ не был проведен, врач-лаборант указывает ее в заключении и дает рекомендации для дальнейших действий (повторить забор материала, взять пробу из другой локализации).

Проведение ПЦР в медицинском центре «Клиника К+31»

Клиницисты и врачи-лаборанты медицинского центра «Клиника К+31» обладают богатым опытом забора материала для ПЦР и его исследования. Благодаря их грамотным и слаженным действиям наши пациенты получают максимально достоверные результаты в короткие сроки. Лаборатория центра оснащена современной техникой от ведущих мировых производителей медицинского оборудования. Тщательный контроль качества нашей лаборатории дает нам уверенность в выдаваемых заключениях. Исследование методом ПЦР – это «золотой стандарт» диагностики и контроля многих инфекционных болезней, а также способ получить ценнейшую информацию о том, как сохранить свое здоровье на долгие годы.

klinika.k31.ru

Правила забора материала для микробиологического исследования

Правила забора материала для микробиологического исследования

Биологический материал целесообразно получать до начала антимикробной терапии.

• Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал. 
• Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой. 
• Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования. 
• Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала — стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.

Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

• Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!). 
• При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч. 
• Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла. 
• Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой. 
• Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке. 
• К материалу прилагают сопроводительный до­кумент, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; пред­полагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследова­ния.

Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

Исследование крови

• Для взятия крови используют стерильные шприцы или системы для одноразового пользования. 
• Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать резиновые перчатки). 
• Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной. 
• Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности. 
• При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одномоментно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования. 
• Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения. 

Забор и посев крови
Для предотвращения контаминации кожу пациента над пунктируемой веной тщательно обработать следующей последовательности:

• 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
• 5% настойкой йода (или йодопирона, йодоната, хлоргексидина) начиная обработку от центра будущего прокола к периферии — 30 секунд 
• этиловым 70% спиртом (или заменяющим его антисептиком) 
• дают высохнуть обработанному участку кожи 
• не пальпируя вену повторно, производят венепункцию 
• вновь обрабатывают участок 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
• При аллергической реакции на йод кожу дважды обрабатывают 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 

Использование сред, приготовленных в лаборатории:
Среды в стеклянных флаконах, закрытые стерильными ватно-марлевыми пробками и предохранительными стерильными бумажными колпачками:
 — двухфазная среда» (комбинация плотной и жидкой среды в одном флаконе) – для роста аэробных микроорганизмов
 — полужидкие специальные среды — для роста анаэробных микроорганизмов

• Посев осуществляют во флаконы со средами над пламенем спиртовой горелки. 
• Взятие и посев крови осуществляют два человека – в то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой — над пламенем спиртовки
• Открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их. 
• Рекомендуемое соотношение объёмов крови и среды 1:10 (10 мл у взрослых, 5 мл у детей)

Использование коммерческих сред:
 — для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой)
 — для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой)
 — педиатрические флаконы – (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл

• Снимают предохранительную пластиковую крышку. 
• Дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком). 
• Дают просохнуть обработанной поверхности. 
• Прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови. 
• Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции — обычно 10-30 мл для взрослых и 1- 5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови). 
• Сначала производят посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца. 
• Перемешивают осторожно круговыми движениями содержимое флакона. 
• Маркируют флаконы и до транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!) 
• Исследования крови и других жидкостей организма с помощью анализатора культур крови BacT/ALERT-

При отсутствии в отделении флаконов для гемокультур.

• В исключительных случаях, при экстренной ситуации допускается использование 20-миллилитрового шприца с иглами. 
• В шприц предварительно набирают 0,5-0,7 мл стерильного гепарина. 
• Заменяют иглу. 
• Затем пунктируют вену, соблюдая правила асептики. Набирают 10-15- мл крови. 
• Перемешивают осторожным покачиванием с гепарином (иглу со шприца не снимают). 
• В этом же шприце с согнутой у основания иглой (или надетым стерильным колпачком) немедленно отправляют в лабораторию.

Исследование сосудистого катетера

• Исследуют при подозрении на инфекцию катетерного происхождения.
• В асептических условиях отрезают его дистальный (внутрисосудистый) конец около 5 см длиной. 
• Помещают в стерильный контейнер (пробирку). 
• Доставляют в лабораторию немедленно. 
• Важно не допускать высыхания образца. 

Исследование ликвора

• Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3 -5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
• Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков. 
• При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате. 
• При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

Исследование жидкостей организма из стерильных в норме полостей

• Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости. 
• Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации. 
• Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок. 
• Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл. 
• Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой. 
• Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце. 
• Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий. 
• При необходимости лучше использовать гепарин. 
• При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 — 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.

Исследование материала при раневой инфекции

• Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки. 
• В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты. 
• Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода. 
• Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
• Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой. 
• Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками. 
• Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.

Можно использовать специальные транспортные контейнеры и пробирки со средами. На транспортной среде материал хранится 24 часа.

Отделяемое открытых инфицированных ран
Материал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй — для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

Отделяемое из дренажей.

• Берут стерильным шприцем и в количестве 1-2 мл помещают в стерильную пробирку или доставляют в шприце. 
• Можно использовать для исследования концы удалённых дренажных трубок 

Кусочки тканей
Помещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.
Глубокие раны или абсцессы.

• Поверхность раны дезинфицируют 70% этиловым спиртом, затем 1-2% йодным раствором. 
• Материал берут из глубины, избегая контаминации поверхностной микрофлорой раны. 

Биоптат с ожоговой поверхности
Поверхность раны дезинфицируют и берут образец с помощью пункционной биопсии (3-4 мм) для количественного исследования.
Язвы и узелковые утолщения

• Пораженную область кожи дезинфицируют, удаляют поверхностный слой и делают соскоб со дна язвы или узелкового утолщения. 
• Если имеется экссудат, его собирают шпри­цем или стерильным тампоном. 

Раны после укусов

• Гнойное содержимое из раны получают шприцем после надреза, дренирования или поверх­ностной обработки инфицированной раны. 
• При свежих укусах бактериологическое ис­следование не проводят, так как в этот период труд­но выделить этиологически значимый микроорга­низм. 

Кости

• Материал получают при оперативном вмеша­тельстве. Образец помещают в стерильный контей­нер без формалина и других консервантов. 
• Для предотвращения высыхания образца в контейнер может быть добавлен стерильный физ.­раствор.

Материал при инфекциях верхних дыхательных путей
Образцы из зева

• Исследуют прежде всего для выявления α-гемолитических стрептококов группы А, H.influenzae( при эпиглотитах).При наличии специфического анамнеза проводят исследование для исключения гонококковой этиологии фарингита. 
• Не следует брать материал при воспалённом надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей! 
• Мазок из зева следует брать до еды или через 2 — 3 часа после приёма пищи. Перед взятием пробы больному необходимо прополоскать рот тёплой кипячёной водой. 
• Аккуратно прижимая язык шпателем, вводят стерильный тампон между дужками миндалин и язычком. 
• Движением тампона вперёд и назад собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой.
• Тампон помещают в стерильную пробирку, при необходимости используя транспортную среду. 

Внимание: При взятии пробы со слизистой зева (глотки) нельзя касаться щёк, языка, дёсен, а также собирать слюну.

Взятие материала при исследовании на возбудителей дифтерии.

• Для взятия материала используют стерильные ватные сухие тампоны. 
• Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами, натощак или не ранее, чем через 2 часа после еды, при хорошем освещении с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, слизистых щек и зубов. 
• При наличии налетов материал следует брать с границы пораженных и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном. 
• Для взятия материала из носа используют один тампон, который вводят сначала в один, а потом в другой носовой ход, не касаясь крыльев носа снаружи 
• Необходимо обеспечить доставку материала в лабораторию не позднее 2-х часов, а при использовании глицериновых тампонов — в течение 4-х часов. 

Бактериологическое исследование носоглоточной слизи на менингококки

• Исследуемый материал берут из задней стенки носоглотки натощак или через 3 — 4 часа после еды стерильным ватным тампоном, укрепленным на изогнутой проволоке. 
• Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка. Тампон вводят концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2 -3 раза по задней стенке. 
• При извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка. 
• Материал может быть взят смоченным тампоном, который затем доставляют в лабораторию. 
• Питательную среду для смачивания тампонов получают в бактериологической лаборатории. Можно использовать специальные транспортные среды. 
• Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая охлаждения

Мазок со слизистой передних отделов полости носа.

• Исследование обычно проводится для выявления носительства метициллинрезистентных штаммов S.aureus. 
• Мазок со слизистой носа берут одним стерильным тампоном. 
• Тампон вводится сначала в здоровую ноздрю до упора на уровне носовой раковины и вращательными движениями собирают материал со слизистой. Повторяют процедуру в другом носовом ходе. 
• Тампон помещают в стерильную пробирку. 

Аспират из придаточных пазух

• Исследуют при бактериальных синуситах помимо исследования микрофлоры носовой полости. 
• Материал отсылают в лабораторию в анаэроб­ной транспортной среде или непосредственно в шприце. 
• He рекомендуется исследовать промывную жидкость из носоглотки, так как образцы контаминируются нормальной микрофлорой верх­них дыхательных путей, что не позволяет правиль­но трактовать результаты анализа. 
• При хронических синуситах возможен прицельный забор материала для микробиологического исследования с использованием эндоскопов. 

Исследование отделяемого уха
Жидкость при тимпаноцентезе

• Исследуют при среднем отите в случаях, если первичная терапия оказалась безуспешной или если тимпаноцентез проводился как лечебная процедура. 
• Очищают наружный слуховой проход слабым раствором детергента, после прокола барабанной перепонки врач-отоларинголог шприцем собирает жидкость и помещает ее в стерильный контейнер или отправляет в лабораторию в шприце с загнутой иглой или с защитным колпачком. 
• При невозмож­ности своевременной доставки целесообразно ис­пользовать транспортную среду. 
• При самопроизвольной перфорации барабан­ной перепонки экссудат собирают стерильным там­поном, используя слуховое зеркало. Однако в этом случае высока вероятность контаминации биологи­ческого материала эндогенной микрофлорой. 

Материал при воспалении наружного уха.

• Обрабатывают кожу 70% этиловым спиртом и промывают стерильным изотоническим раствором хлорида натрия (физраствором). 
• Материал из очага берут стерильным ватным тампоном. Тампон помещают в стерильную пробирку. 
• При поражении среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранные в стерильную пробирку или транспортную среду. 

Исследование отделяемого глаз.

• Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры. 
• Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. 

Отделяемое с конъюнктивы

• Берут стеклянными стерильными палочками или платиновой петлей, предварительно фламбированной в пламени спиртовки и остуженной и погружают в 0,2 % сахарный бульон. 
• При наличии достаточно обильного гнойного отделяемого использую стерильные ватные тампоны (желательно коммерческие), которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. 
• Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками) 

Край век.
Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.
Роговица.

• Материал на исследование после обезболивания, можно взять платиновой петлёй или другим подходящим инструментом. 
• Если пациент применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность. 
• В кабинете врача производят посев на питательный бульон. 
• Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

Мокрота.

• Исследуют свободно откашливаемую мокроту, утреннюю порцию, натощак 
• Пациент предварительно должен почистить зубы, дёсны, язык, слизистую оболочку щёк зубной щёткой и прополоскать рот кипяченой водой. 
• Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства или проводят ингаляцию физ. раствором. 
• Мокроту собирают в стерильную посуду с крышкой. 
• Сроки доставки мокроты в лабораторию не должны превышать 1,5-2 часа от момента её получения (допускается хранение в холодильнике, но не более 6 часов), т.к. задержка ведёт к аутолизу S.pneumoniae, а за счёт размножения бактерий-контаминантов меняется истинное соотношение микрофлоры бронхиального секрета. 

Качество собранной мокроты можно оценить по данным микроскопии нативных мазков по Граму.

При наличии в мазке мокроты более 10 эпителиальных клеток в поле зрения и менее 25 полиморфно-ядерных лейкоцитов (ПЯЛ) при малом увеличении микроскопа (объектив Х10) высока вероятность контаминации образца содержимым полости рта (слюной). Дальнейшее исследование такого материала нецелесообразно, материал необходимо взять повторно.

Трахеобронхиальные смывы

• Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности её выделить естественным путём. 
• Специальным шприцем в трахею вводят около 10 мл стерильного физ. раствора и собирают откашливаемый смыв в стерильную посуду. 
• Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа. 
• Недостатком является очень часто значительное разведение трахеобронхиального содержимого, что снижает возможность выделения бактерий, а концентрация их падает примерно в 100 раз по сравнению с мокротой. 

Плевральная жидкость.

• Кожу перед пункцией обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем спиртовой настойкой йода, затем опять спиртом. 
• После прокола жидкость собирают шприцем в сте­рильную пробирку и незамедлительно отправляют в лабораторию. 
• Допускается посев плевральной жидкости (по 5 мл) в аэробные и анаэробные флаконы, ис­пользуемые для исследования крови.

 Моча при инфекциях мочевыводящих путей 

• Исследуют утреннюю среднюю порцию (10-20мл) сво­бодно выпущенной мочи (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает). 
• Не следует принуждать пациента к приему жидкости для фор­сирования диуреза, так как происходит разбавле­ние мочи и снижение числа бактерий. 
• Для сбора мочи используют стерильные ём­кости которые закрываются резиновой стерильной пробкой. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна. 
• Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой во избежание излишней ее контамина­ции при мочеиспускании нормальной микрофло­рой промежности. 
• Доставка мочи в лабораторию должна осу­ществляться в максимально короткие сроки. Посев следует проводить не позднее 2 ч после взя­тия материала либо в течение 8 ч при условии ее хранения в холодильнике. (При 4°С число бакте­рий в моче обычно остается стабильным в преде­лах 24 ч). 
• Взятие мочи следует повторить, если нет ус­ловий для ее хранения в холодильнике, и с момента взятия образца прошло более 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостовер­ными. 
• Недопустимо бактериологическое исследова­ние мочи, собранной в течение суток. 
• Не рекомендуется исследовать мочу, полу­ченную при наличии постоянного катетера 

Материал при инфекциях урогенитального тракта
Исследование отделяемого женских половых органов
Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследования
Амниотическаю жидкость
Собирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.
Материал из уретры

• Собирают не ранее, чем через 1 ч по­сле мочеиспускания. 
• Отделяемое из уретры собирают стерильным ватным тампоном. 
• Если отделяемое получить не удается, наруж­ное отверстие уретры обмывают мылом и ополаски­вают кипяченой водой, вводят в уретру тонкий сте­рильный «уретральный» тампон на глубину 2-4 см, аккуратно вращают его в течение 2 сек., вынимают, по­мещают в соответствующую транспортную среду и доставляют в лабораторию. 

Материал из вульвы, преддверия влагалища

• Берут стерильным ватным тампо­ном.
• При воспалении бартолиниевых желез произ­водят их пункцию. 

Материал из влагалища.
После введения зеркала и подъемника во вла­галище материал собирают стерильным ватным тампоном с заднего свода или с патологически из­мененных участков.
Цервикальный канал.

• Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть тщательно обрабатывают ватным тампоном, смоченным стерильным физрас­твором или стерильной водой. 
• Тонкий стерильный ватный тампон осторожно вводят в цервикальный канал, не касаясь стенок вла­галища, и берут материал. 
• Для бактериологческого исследования можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала.

Матка.

• Правильное взятие материала из матки может быть выполнено только при использовании специальных инструментов типа шприца-аспиратора., имеющего на зонде покрытие. 
• После прохождения зондом цервикального канала в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки. 
• Материал из шприца помещают в стерильную пробирку. 

Придатки матки.
Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмеша­тельстве или при диагностической пункции опухо­левидных образований, проводимой через влага­лищные своды.
Приготовление мазков для микроскопии.

• Помимо взятия материала на посев врач-гинеко­лог готовит мазки для микроскопии (не менее двух — для окраски по Граму и специальными метода­ми), используя отдельные стерильные тампоны или стерильные гинекологические инструменты. 
• Предметные стекла, предназначенные для приготовления мазков, маркируют. 
• Материал равномерно распределяют на пред­метном стекле осторожными движениями, избегая грубого втирания и резких штриховых движений инструментом. 
• Мазок высушивают при комнатной температу­ре, покрывают чистым предметным стеклом или по­мещают его в чашку Петри и отправляют в лаборато­рию. 
• Не допускается хранение влажного мазка между двумя стеклами. 

Исследование отделяемого мужских половых органов
Уретра.

• Материал собирают не ранее 2 часов после мочеиспускания. 
• Вводят в уретру тонкий стерильный ватный тампон на глубину 2- 4 см, аккуратно вращают его в течение 1-2 сек., вынимают, помещают в транспорт­ную среду и доставляют в лабораторию.

Исследование секрета простаты.

• Перед отбором проб необходимо тщательно вымыть наружные половые органы и область заднего прохода тёплой водой с мылом, затем сполоснуть тёплой водой. 
• Проводят массаж простаты через прямую кишку. Материал собирают в стерильную пробирку или стерильным ватным тампоном. 
• При наличии симптомов острого простатита массаж простаты не проводят. 
• Для получения более достоверных результа­тов можно дополнить это исследование бактерио­логическим исследованием мочи, полученной пе­ред и сразу после массажа простаты, что позволит выявить источник инфекции. Основным методом лабораторной диагностики простатита, позволяю­щим определить локализацию очага инфекции, яв­ляется метод Meares и Stamey: исследованию под­вергают первую порцию мочи, среднюю порцию мочи, секрет простаты и порцию мочи, полученные после массажа предстательной железы (так назы­ваемая 4-стаканная проба). 
• Пробы клинического материала доставить в лабораторию не замочив пробки, чтобы не исказить результат исследования.

Придатки яичек.
Материал собирают путем аспирации с помо­щью шприца и иглы.

Язва полового члена.

• Очищают поверхность язвы тампоном, смо­ченным физ.раствором. 
• Производят соскоб язвы до появления сероз­ной жидкости. 
• Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения (следует из­бегать кровоточивости). 
• Надавливают у основания язвы до появления прозрачной жидкости, аспирируют ее шприцем с тонкой иглой, закрывают иглу защитным колпач­ком и транспортируют в лабораторию.

Соскобы мочеиспускательного канала, шейки матки для исследования на урогенитальный хламидиоз

• Соскобы слизистых оболочек мочеиспускательного канала и шейки матки берут одноразовыми стерильными зондами, «щёточками», ложкой Фолькмана или аналогичными инструментами со слегка затуплёнными краями, соблюдая правила асептики и антисептики. 
• Наружные половые органы дезинфицируют, выделения удаляют тампонами или с помощью аспираторов. 
• При повышенной чувствительности слизистую оболочку предварительно анестезируют инстилляцией в мочеиспукательный канал 1-2 мл о.5% раствора дикаина. 
• Соскобы делают из глубины канала(до 6 см), со всех четырёх квадрантов. 
• Соскобы шейки матки берут после удаления слизистой пробки из глубины её канала, а также из влагалищной части шейки матки. 
• Соскобы берут осторожно, при лёгком надавливании. В материале должно быть возможно большее количество эпителиальных клеток и минимальное количество слизи, экссудата и примесей крови. 
• Соскобный материал распределяют тонким слоем на поверхность 8-миллиметровой лунки чистого обезжиренного предметного стекла так, чтобы все стороны тампона соприкасались с поверхностью стекла. 
• Мазок высушивают на воздухе 20-30 минут. 
• Допускается хранение мазка на стекле до фиксации 2-3 часа при комнатной температуре. 
• Мазки фиксируют соответственно методу окраски. 

Материал при исследовании на анаэробы
Общие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит.
Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора. 

Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и сино­виальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно ана­эробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного от­верстия) и ран. 

Если нет возможности использо­вать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при ком­натной температуре;
Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1×1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки мате­риалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).
Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

• При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п. 
• Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя. 
• Порцию фекалий помещают в стерильный флакон. 
• Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл. 
• При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу. 
• Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки 
• Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно — марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см. 

Исследование желчи (дуоденального содержимого) при инфекциях желчевыводящих путей

• Желчь собирают при зондировании в проце­дурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки, либо во время оператив­ного вмешательства с помощью шприца в одну про­бирку. 
• Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато — желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования. 
• Полученные порции желчи доставляют в ла­бораторию не позднее 1 -2 ч от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении

Микробиологическое исследование грудного молока.

• Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении. 
• Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном). 
• Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
• Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат. 
• Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок. 
• До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике. 
• Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.

Правила забора и доставки материала от больных и контактныхв вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ.
Пробы от больных гриппом и ОРВИ

• Для вирусологического исследования отбирают при первом появлении клинических симптомов, т.е. в остром периоде заболевания (не позднее третьего дня), так как в этот период в носоглотке больного, а также в крови находится максимальное количество вируса. 
• Пробы немедленно доставляют в вирусологическое отделение МЛ ГЦГЭ (ул. Короля,23, тел. 200-92-51). 
• Материалом для исследования служат соскоб из носа и мазок из зева, а также сыворотки крови, взятые в начале болезни и в период выздоровления. 

Соскоб из носа.
Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу , вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.
Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).
Мазки из зева
Рекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон из-под пенициллина, палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

Кровь для серологических исследований

• Парные сыворотки исследуют для определения прироста титра антител к вирусам (во второй сыворотке по сравнению с первой). 
• Первую кровь берут в самом начале заболевания, вторую – 10-14 дней спустя. 
• Кровь в объеме не менее 1 мл берут в чистую центрифужную пробирку, отделяют сыворотку и помешают в пластиковую пробирку, которую хранят в морозильной камере до взятия второй сыворотки от того же больного. 
• В вирусологическое отделение МЛ обе сыворотки доставляются одновременно. 
• Результаты исследования зависят от качества доставляемого материала, от сроков забора и своевременной доставки в лабораторию. 

Пробы фекалий
Для обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.

sarstedt.com.ua

Правила забора биологического материала

Порядок взятия клинического материала в пробирку с транспортной средой:

1. Открыть  крышку пробирки.

2. С помощью  одноразового стерильного зонда получить  отделяемое соответствующего

биотопа  (влагалище, уретра, цервикальный канал).

3.Перенести  зонд с клиническим материалом  в пробирку с  транспортной средой  объемом 1,5 мл, когда зонд упрется в дно пробирки, дополнительным усилием согнуть тонкую часть зонда до насечки, затем отломить и оставить зонд в пробирке .При необходимости получения клинического  материала из нескольких биотопов повторить процедуру,  каждый раз забирая клинический материал новым  зондом в новую пробирку.

3. Пробирку плотно  закрыть крышкой, промаркировать.

Особенности взятия клинического материала цервикального  канала:

1.Клинический материал цервикального канала получают  после введения во влагалище гинекологического  зеркала с помощью  уретрального зонда или цервикальной цитощетки  (для исследования на ВПЧ необходимо достаточное количество эпителиальных клеток!).

2.Перед взятием клинического материала необходимо  тщательно обработать отверстие цервикального  канала с помощью стерильного  марлевого тампона и затем  обработать шейку  матки стерильным физиологическим раствором.

3.После введения уретрального зонда в  шеечный канал на 1,5 см  его вращают несколько раз (2-3 полных оборота по часовой стрелке) и извлекают . При извлечении  зонда необходимо  полностью исключить  его касание стенок  влагалища.

4. Полученный  клинический материал помещается в  пробирку с транспортной  средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из влагалища:

В день обследования  женщины не должны проводить  туалет половых органов и  спринцевание влагалища.

1. Клинический  материал из влагалища получают  с заднего или  боковых сводов с помощью  вагинального или уретрального зонда  путем соскоба с поверхности эпителия.

2. Клинический  материал должен быть  получен ДО проведения  мануального исследования.

3. Перед  манипуляцией гинекологическое зеркало можно  смочить теплой водой, применение  антисептиков для обработки зеркала  противопоказано.

4. У девочек  (virgo) клинический материал получают  со слизистой оболочки  преддверия влагалища  без использования гинекологического зеркала.

5. Полученный клинический материал помещается  в пробирку с транспортной  средой (см. выше).

Особенности взятия клинического материала из уретры у женщин:

1. Клинический  материал из уретры  получают с помощью уретрального  зонда.

2.Перед взятием клинического материала  пациентке рекомендуется воздержаться от мочеиспускания  в течение 1,5-2  часов.

3. При  наличии свободных уретральных выделений наружное отверстие уретры следует очистить  с помощью ватного тампона.

4. При отсутствии  свободных выделений может быть  проведен легкий массаж уретры.

5. После  введения инструмента в уретру  на глубину 1 см  необходимо продвигать его к наружному  отверстию, слегка нажимая на заднюю  и боковые стенки уретры (вращательные  движения болезненны).

6. Полученный  клинический материал помещается в  пробирку с транспортной средой(см. выше).

Для исследования материала ,полученного из нескольких биотопов, процедуру повторяют, каждый раз используя новый стерильный зонд и новую пробирку!!!

Недопустимо смешивать материал из   цервикального канала, влагалищного содержимого и уретры  в одной пробирке!

 Особенности взятия клинического материала из уретры у мужчин:

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться     от     мочеиспускания     в     течение

1,5–2 часов. Для исключения искажений результатов определения состава микрофлоры урогенитального тракта мужчин из-за присутствия в урогенитальном тракте транзиторной микрофлоры в течение трёх дней перед взятием биоматериала рекомендуется половое воздержание или использование защищенного полового контакта.

1.Перед взятием соскоба из уретры обрабатывают головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.

2.Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном.

3.Вводят зонд в уретру на глубину 1-2 см. Несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют. Отделяемое забирают в достаточном количестве. Допустимо умеренное присутствие примесей в виде слизи, крови и гноя.

Взятия клинического материала с крайней плоти головки полового члена (ГПЧ):

Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться     от     мочеиспускания     в     течение

1,5–2 часов.

1.С помощью одноразового зонда делают  соскоб эпителиальных клеток из соответствующего биотопа (крайняя плоть головки полового члена, препуциальный мешок)  и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют.

Условия хранения и транспортировки биоматериала:

1. Пробирки с полученным клиническим материалом должны быть промаркированы.

2. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: ФИО, возраст пациентки (та), клинический материал, предполагаемый диагноз, показания  к обследованию, дату и время взятия пробы, наименование учреждения (подразделения), направляющего клинический материал.

3. Если время транспортировки клинического материала от момента взятия до момента его доставки в лабораторию не более суток, то пробирку с клиническим материалом необходимо хранить и доставлять в лабораторию при температуре бытового холодильника (+ 4+10°С), не замораживая.

niigene.chitgma.ru